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¡°疾病Hi-C¡±带您突破精准医疗


        Hi-C技术源于染色体构象捕获£¨Chromosome Conformation Capture¡ª3C£©技术£¬以整个细胞核为研究对象£¬利用高通量测序技术£¬结合生物信息学方法£¬研究全基因组范围内整个染色质DNA在空间位置上的关系£¬揭示染色体的三维结构¡£2015年£¬美国国立卫生研究院£¨NIH£©宣布£¬将人类染色体的三维结构研究方向视为进一步认知疾病的重大机遇£¬并批准立项为共同基金重大项目£¬即¡°3D 核小体¡±£¨3D-Nucleome£©计划£»2016年£¬中国启动精准医疗计划£¬国家科?#30142;?#21457;布¡°精准医学研究¡±国家重点研发专项¡£可见Hi-C加入到疾病研究中是突破精准医疗的重要方向¡£

        之前疾病研究多集中于基因组¡¢转录组和表观组层面£¬大家关注基因突变¡¢表观修饰对于疾病的影响¡£近几年£¬染色体三维结构£¨Hi-C£©作为崭新的研究方向£¬在疾病研究中的地位越来越重要£¬高分文章层出不穷£¬如表1¡£

表1 Hi-C在疾病中的文章发表情况

年份
期刊
影响因子
研究问题
2016年
Genome Research
11.351
Hi-C研究前列腺癌发生机制
2016年
Cell
28.71
捕获Hi-C研究类风湿性关节炎¡¢
1型糖尿病和Crohn氏病等自身免疫疾病
2016年
Nature
38.138
Hi-C研究X染色体沉默机制
2015年
Cell
28.71
Hi-C研究手指畸?#20301;?#21046;
2015年
Genome Research
捕获Hi-C研究乳腺癌发生机制
2015年
Genome Biology
10.81
Hi-C研究乳腺癌发生机制
2014年
Nature Communication
11.47
捕获Hi-C研究结直肠癌发生机制

一¡¢疾病Hi-C技术?#38382;?/strong>
1. 材料选择£º

    疾病细胞/组织以及正常细胞/组织¡£
2. 测序策略£º
    建议分辨率40kb及以?#24076;¬Illumina HiSeq PE150测序
3. 疾病Hi-C多组学研究策略£º

图1疾病Hi-C多组学研究策略

二¡¢案例解析
案例1£ºHi-C研究乳腺癌发生机制

        本篇文章发表在Genome Biology?#24076;¨IF=10.81£©£¬选取人乳腺上皮细胞系MCF-10A和乳腺癌细胞系MCF-7 £¬文章思路简单清晰£¬主要是在不同分辨?#27663;?#36827;行染色体三维结构的比较¡£

1. 样本选择£º
    本文选取两种细胞系即人乳腺上皮细胞系MCF-10A和乳腺癌细胞系MCF-7¡£
2. ?#30446;?#21450;测序策略£º
    ?#30446;⣺Hi-C?#30446;?转录组?#30446;?
    测序策略£º RNA-seq£ºHiSeq 2000 SE100
    Hi-C£ºHiSeq 2000 PE100
3. 研究思路

图2 文章研究思路

4. 研究结果展示
£¨1£©1M分辨?#27663;?#20154;乳腺上皮细胞系MCF-10A和乳腺癌细胞系MCF-7在染色体互作上的差异
        通过染色体相互作用热图比?#24076;?#32905;眼是很难寻找二者的差异£¬或者说观察到的差异不明显£¬本文采取¡°减法¡±算法£¬巧妙地将两个细胞系的互作热图整合到一张图中£¬结果发现在小染色体中£¨16-22号染色体£©£¬MCF-10A细胞系中有较强的基因相互作用¡£


图3 MCF-10A和MCF-7中16-22号染色体间相互作用比较

£¨2£©A/B compartment 差异分析
        之前的研究表明£¬基因组内的相互作用有两种模式£º开放区£¨(A-type£©和封闭区£¨(B-type£©¡£在乳腺癌细胞系MCF-7和乳腺上皮细胞系MCF-10A基因组中鉴定出了这两种区室£¬MCF-10A¡¢MCF-7的开放和封闭区域分布大体上非常相似£¬只有一些区域有A到B区?#19968;?#32773;B到A区室的转化¡£这些转化区域中的很多基因和癌症重要通路WNT相关¡£


图4 A/B compartment 差异分析

£¨3£©TAD差异分析
       MCF-10A和MCF-7基因组?#20889;?#35268;模染色体相互作用差异和改变的基因区室内是否会对TAD形成?#31361;?#22240;表达造成影响是未知的¡£为解决这个问题£¬用40kb分辨率来鉴定TAD边界£¬发现一些TAD边界是乳腺癌细胞系特有的¡£


图5 TAD差异分析

案例2£º捕获Hi-C研究类风湿性关节炎¡¢1型糖尿病和Crohn氏病等自身免疫疾病

       本篇文章是2016年11月18号由英国Babraham研究所Peter Fraser博士研究团队发表在Cell?#24076;¬Babraham研究所一直专注于捕获Hi-C方法的研发和应用£¬文章先后发表在Genome Research¡¢Nature Genetics上¡£

1. 样本选择£º
     17种不同类型的血细胞£¬含有Naive CD4+ T cells¡¢Megakaryocytes¡¢Neutrophils等自身免疫疾病相关的细胞系¡£
2. ?#30446;?#21450;测序策略£º
     ?#30446;? Hi-C¡¢Capture Hi-C
     测序策略£ºIllumina HiSeq2500
3. 研究结果:
       通过对17种不同类型的血细胞中与基因相互作用的调控元件调查£¬本文建立起了在各个细胞类型中调节特定基因的远程调控元件的集合¡£远程调控元件区域的一些微小变化£¬会干扰基因的正常调控£¬导致特定疾病的发生¡£本研究发现了成千上万与特定疾病相关的新基因£¬包括类风湿性关节炎¡¢1型糖尿病和Crohn氏病等疾病¡£


图6 捕获Hi-C揭示疾病相关机制

案例3£ºHi-C揭示手指畸?#20301;?#21046;

本篇文章发表在Cell?#24076;?#37319;用的测序技术种类以及样本丰富程度都是第一篇乳腺癌文章达不到的¡£

1. 样本选择£º
     手指畸形病人的血液样本¡¢皮肤组织样本£¬野生小鼠胚胎干细胞¡¢CRISPR编辑后的突变小鼠模型¡£
2. 测序技术种类£º
     Hi-C¡¢4C-seq¡¢人全基因组测序¡¢外显子测序¡¢RNA-seq¡¢ChIP-seq等¡£
3. 研究思路£º
       本文从病人样本出发£¬采取人重测序寻找手指畸形对应的染色体变异£¬接着采取小鼠模型验证染色体变异是否引起染色体三维结构的变化£¬最终回归病人样本揭示手指畸形的机制¡£发?#36136;?#26579;色体变异£¨缺失¡¢复制¡¢倒位£©引起了染色体三维结构的变化£¬使原来的TAD边界被打破£»从而远程调控元件与目的基因间的互作发生改变£¬引起基因表达水平改变£¬造成手指畸形¡£


图7 研究思路

4. 结果展示£º
£¨1£©人重测序寻找手指畸形相关的染色体变异
       对手指畸形病人血液样本进行人全基因组重测序£¬发现在三?#36136;?#25351;畸形中均有相应的染色体变异发生¡£ 短指£º染色体缺失£¬包含EPHA4 PAX3 非编码区的一端区域£¬并指£º染色体倒位和区域复制£¬多指£º染色体区域复制¡£


图8 手指畸形样本的染色体变异情况

£¨2£©CRISPR 方法构建手指疾病的相关小鼠模型£¬探究染色体变异引起的染色体三维结构变化
       在小鼠模型中用4C-seq发现染色体重排导致异常表达的基因与含有Epha4 的TAD产生新的相互作用£¬即染色体变异引起染色体三维结构发生变化£¨TAD的边界改变£©¡£ 此外£¬本文返回到病人样本£¬短指¡¢多指¡¢并指病人?#19978;?#32500;细胞4C-seq结果与小鼠手指4C-seq和人Hi-C结果高?#35748;?#20284;£¬在病人细胞系中已破坏的TAD导致相互作用异常¡£


图9 染色体变异引起染色体三维结构变化

£¨3£© TAD边界改变导?#30053;?#31243;调控元件和目的基因相互作用发生变化
       结合已有的ChIP-seq数据发现£¬边界发生变化的TAD中含有重要的增强子£¬这些增强子与相邻TAD内的基因有异常的互作£¬导致调控紊乱£¬造成手指畸形¡£


图10 增强子与基因互作紊乱

参考文献£º
[1]Taberlay P C, Achingerkawecka J, Lun A T, et al. Three-dimensional disorganisation of the cancer genome occurs coincident with long range genetic and epigenetic alterations.[J]. Genome Research, 2016.
[2]Javierre B M, Burren O S, Wilder S P, et al. Lineage-specific genome architecture links enhancers and non-coding disease variants to target gene promoters[J]. Cell.
[3]Giorgetti L, Lajoie B R, Carter A C, et al. Structural organization of the inactive X chromosome in the mouse.[J]. Nature, 2016, 535(7613).
[4]Lupi¨¢ñez D G, Kraft K, Heinrich V, et al. Disruptions of topological chromatin domains cause pathogenic rewiring of gene-enhancer interactions.[J]. Cell, 2015, 161(5):1012-25.
[5]Dryden N H, Broome L R, Dudbridge F, et al. Unbiased analysis of potential targets of breast cancer susceptibility loci by Capture Hi-C.[J]. Genome Research, 2014, 24(11):1854-1868.
[6]Barutcu A R, Lajoie B R, Mccord R P, et al. Chromatin interaction analysis reveals changes in small chromosome and telomere clustering between epithelial and breast cancer cells[J]. Genome Biology, 2015, 16(1):1-14.
[7]Jäger R, Migliorini G, Henrion M, et al. Capture Hi-C identifies the chromatin interactome of colorectal cancer risk loci[J]. Nature Communications, 2015, 6.


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